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Contents
Preface 11
I/II. Chapter 1. Phospholipase D as a survival factor during anti-cancer drug induced cell death 12
1. Abstract 1 13
2. Introduction 15
3. Materials and Methods 18
Materials 18
Cell culture 18
PLDs retroviral vector construction and virus production 19
Stable transfection of PLDs 19
Reverse transcriptase polymerase chain reaction 20
PLD activity assay 21
Western blot analysis 22
Measurement of phosphatidylserine (PS) exposure. 23
Cell viability 23
Small Interference RNA (siRNA) synthesis and transfection 23
Statistical analysis 24
4. Results 25
Apoptosis of stomach cancer cells (SNU 484 cells) induced by taxotere. 25
Effect of taxotere on Bcl-2 and PLD expression level in stomach cells. 25
Effect of PLD on taxotere-induced cell death in stomach cells. 26
Overexpression of either PLD1 or PLD2 inhibits taxotere induced apoptosis in cultured SNU 484 cells. 28
Expression of PLD suppresses taxotere-induced cell death through Bcl-2 regulation. 29
Bcl-2 expression was inhibited by down regulation of PLD1 or PLD2 using small interfering PLD1 or PLD2 RNA. 29
PA is involved in upregulation of Bcl-2 expression. 30
5. Discussion 32
II/III. Chapter 2. Molecular biological study on AP-180 as a phospholipase D inhibitor 51
1. Abstract 2 52
2. Introduction 54
3. Materials and methods 57
Materials 57
Cell culture 58
PLD activity assay 58
Reverse transcriptase polymerase chain reaction 59
Western blot analysis 60
Cloning of hAP180 from human cDNA library 61
Cell viability 62
Transient transfection 62
Immunocytochemistry 63
Construction of human AP180 deletion mutants 64
Immunoprecipitation 65
In vitro synthesis of amino acids and transient transfection. 66
Site-directed mutagenesis 66
Nucleotide Sequencing analysis 67
Statistical analysis 67
4. Results 69
PLD is activated by PMA, and hAP180 inhibits PLD activity stimulated by PMA in variable cell lines 69
hAP180 inhibits PLD1-but not PLD2-induced Bcl-2 expression 70
The hAP180 deletion mutants, in which amino acids from Thr310 to Lys320 are deleted, lost inhibition ability upon PLD activation 71
The amino acids from Thr310 to Lys320 are responsible for binding with PLD and the three amino acids, Thr312, Ser313, and Pro314 are important for inhibition of PLD activity 73
5. Discussion 75
III/IV. References 100
IV/V. 국문요지 110
V/VI. 감사의 글 135
Chapter 1 8
Figure 1-1. PLD signaling and PLD-catalyzed hydrolysis and transphosphatidylation reactions 37
Figure 1-2. Apoptosis induced by taxotere in SNU484 stomach cancer cells. 38
Figure 1-3. Expression patterns of molecules involved in taxotere signaling. 39
Figure 1-4. Effect of PLD on taxotere-induced cell death in stomach cells. 40
Figure 1-5. Overexpression of either PLD1 or PLD2 in SNU 484 cells increased Bcl-2 expression resulting in significant inhibition of apoptosis induced by taxotere. 41
Figure 1-6. Expression of PLD suppresses taxotere-induced cell death through Bcl-2 regulation. 42
Figure 1-7. Effects of PLD1 or PLD2 inhibition using siRNA on expression of Bcl-2 in SNU484 cells. 43
Figure 1-8. Effects of PA on expression of Bcl-2 in SNU484 cells 44
Figure 1-9. Schematic drawing of survival signaling pathway generated by PLDs during taxotere-induced cell death in stomach cancer cells 45
Chapter 2 9
Figure 2-1. Establishment of model cell lines ; screening of high PLD activity using PMA 80
Figure 2-2. PMA induced PLD activity inhibited by hAP180 wild type in KATOIII and SiHa cells 81
Figure 2-3. PA, product of PLD, increases Bcl-2 expression, but AP180 inhibits Bcl-2 expression induced by PLD1 82
Figure 2-4. Human AP180 inhibits PLD1 induced increment of survival rate and exacerbates cell death during anticancer agents induced apoptosis. 83
Figure 2-5. Immunostaining after hAP180 and PLD1 cotransfection into SiHa cells 84
Figure 2-6. Features of hAP180 homologs, c-Myc-hAP180 constructs, and effects of C-terminal deletion mutants on inhibition of PLD activity. 85
Figure 2-7. C-terminal truncated mutants, △314 and △320 can not inhibit PLD activity 86
Figure 2-8. N-terminal truncated mutants, △314 and △320 can not inhibit PLD1 induced increment of survival rate during anticancer agents induced apoptosis. 87
Figure 2-9. Synthetic amino acids (specific residues responsible for inhibition of PMA induced PLD activity ; 310-TVTSPNSTPAK-320, 310-TVTSP-314, and 315-NSTPAK-320) inhibits PLD activity. 88
Figure 2-10. Interaction between PLD1 or PLD2 and hAP180 89
Figure 2-11. Site-directed mutagenesis, T312A, S313A, and T314A can not inhibit PMA-induced PLD activity and S313 is critical motif for binding with PLD1 90
Figure 2-12. Schematic drawing ; hAP180 inhibits survival signaling pathway generated by PLD1 91
Figure 2-13. Suitable target for development of anticancer drug ; inhibitor for PLD acting as survival factor during differentiation, chemoresistance, and apoptosis of the cancer cells. 92
Supplement Figures 1-1. Retrovirus constructions for PLDs overexpression. 113
Supplement Figures 1-2. PA treatment did not change the expression of the anti-or pro-apoptotic Bcl-2 protein family and propranolol did not affect cell viability. 114
Supplement Figures 2-1. Sequencing results of cloned full coding sequences of hAP180 into pCMV-Myc mammalian expression vector. 115
Supplement Figures 2-2. Sequencing results of cloned C-terminal deletion series and N-terminal truncated mutants of hAP180 into pCMV-Myc mammalian expression vector. 118
Supplement Figures 2-3. Sequencing results of site-directed mutagenesis point mutants of hAP180 into pCMV-Myc mammalian expression vector. 127
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인지질 분해 효소 D(phospholipase D, PLD)는 세포내·외부의 호르몬, 싸이토카인, 성장인자 등에 의해 유발되는 항세포사, 세포 내 물질이동, 세포분열 등에 밀접하게 관여되어 있다. PLD는 phosphatidyl choline을 phosphatidic acid (PA)와 choline으로 가수분해 하는 효소이다. PLD의 산물인 PA는 내세포작용에서 clathrin-coated vesicles에서 clathrin의 조립에 꼭 필요한 물질이며, amphiphysins와 synaptojanin과 AP 180과 같은 단백질들도 vesicle의 구조를 형성하는데 조력하는 단백질이다. 기존연구에서 확인된 결과를 바탕으로 볼 때 주목할 것은 amphiphysins, synaptojanin, AP 180 단백질이 PLD의 활성 억제에도 관여한다는 것이다. 본 논문에서는 인간 AP180(hAP180)을 대상으로 PLD 활성 억제에 중요한 구체적 motif를 찾아냈으며 hAP180에 의한 PLD 활성 억제는 암세포의 항암제 민감성을 유도하였다. 이는 hAP180에 의한 PLD 활성 억제가 암세포의 항암제민감도를 높여 항암제 효력 증강을 시사한다. 이러한 가능성을 확인하기 위해 첫 번째로 hAP180 유전자를 인간 cDNA pool로부터 클로닝하였다. 클로닝된 hAP180을 암세포주에 발현시킨 결과 phobol-myristate-acetate(PMA)에 의해 증가된 PLD 활성을 억제하였고 Thr-310에서 Lys-320까지의 11개 아미노산(TVTSPNSTPAK)이 PLD 활성 억제에 중요함을 밝혔다. 이를 아미노말단 부분 5개(310-TVTSP-314)와 카르복실말단 6개(315-NSTPAK-320)로 나누어 처리한 결과 아미노말단 부분의 5개 아미노산이 카르복실말단 6개 아미노산 대비 PLD 활성 억제가 매우 유의하였다. 이 결과를 토대로 볼 때 hAP180을 구성하는 아미노산 중 310-TVTSP-314 부위가 PLD 활성 억제에 중요한 motif임을 시사한다. 또한, AP180의 C-terminal deletion series와 N-terminal truncated mutant series와 이용한 실험 결과에서도 310-TVTSP-314가 PLD 활성 억제에 직접 관여하였다. hAP180의 PLD 활성 억제는 두 단백질의 결합에 의해 일어남을 시사하는 결과로 PMA에 의한 PLD 활성 증가에 따라 세포 안에서 PLD1과 hAP180의 colocalization이 하였다.
PLD 활성 억제에 중요한 5개(310-TVTSP-314) 아미노산을 alanine(Ala)으로 각각 단일 아미노산 치환 돌연변이 연구 결과 Thr312, Ser313, Pro314 아미노산이 PLD 활성 억제에 있어 중요한 역할을 가짐이 확인되었다. 면역침강법을 이용하여 단백질 수준에서의 상호작용을 확인한 결과에서 Ser313이 Ala으로 치환된 돌연변이의 경우 PLD1과의 결합강도가 매우 낮았다. 이는 Ser313이 PLD1과의 결합에서 매우 중요한 motif임을 시사한다. 현재까지의 연구를 바탕으로, PLD1의 아미노산 중 hAP180(특히 310-TVTSP-314 부위)과 결합하는 부위를 탐색할 계획에 있으며, PLD 활성억제제 개발을 위해 3개 아미노산(Thr312, Ser313, Pro314)을 표적으로 한 peptido mimetic drug 제작에 착수할 것이다. 만약 PLD 활성 억제제의 개발이 성공적으로 마무리될 경우 PLD 매개 항세포사를 조절하여 항암치료 시 암세포의 약제내성 감소, 세포사 증진, 항암제의 효능 및 민감도 증가, 항암제 dose-limit toxicity 감소 등의 효과를 가져 올 수 있을 것으로 사료된다.
참고문헌 (81건) : 자료제공( 네이버학술정보 )더보기
원문구축 및 2018년 이후 자료는 524호에서 직접 열람하십시요.
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